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Efecto de la omisión de la yema de huevo en la Crioconservación de semen de bocachico llanero (prochilodus Mariae) sobre la calidad seminal posdescongelación y fertilidad

dc.contributor.advisorMedina Robles, Víctor Mauricio
dc.contributor.authorArdila Artunduaga, Michelle Brigitte
dc.date.accessioned2023-10-17T21:42:53Z
dc.date.available2023-10-17T21:42:53Z
dc.date.issued2021
dc.descriptionIncluye figuras.spa
dc.description.abstractEl propósito del presente estudio consistió en aportar conocimiento sobre el proceso de crioconservación seminal en bocachico llanero (Prochilodus mariae); un Characiforme migratorio, nativo de las cuencas de río Orinoco; mediante la comparación de dos protocolos de criopreservación, en los cuales se usó o se omitió la yema de huevo dentro de la composición del diluyente de crioconservación y su efecto sobre la calidad y fertilidad seminal, la evaluación de un sistema de empaque y la presencia de anormalidades morfológicas en este. Este estudio fue realizado en el Laboratorio de Reproducción y Crioconservación de peces del Instituto de Acuicultura (IALL) de la Universidad de los Llanos, ubicado en la ciudad de Villavicencio. Se utilizaron 5 machos sexualmente maduros para le extracción del semen y 5 hembras para la obtención de ovocitos. Los peces fueron inducidos hormonalmente utilizando Extracto de Pituitaria de Carpa (EPC), con una dosis única de 4 mg/kg de peso vivo para los machos y 5,5 mg/kg en hembras. Para la obtención de gametos; los peces fueron tranquilizados mediante una inmersión en 2-Fenoxietanol. Se establecieron dos protocolos en los cuales se utilizó Cloruro de Sodio (NaCl 0,9% p/v), metanol (10% v/v) y glucosa (6% p/v), además de yema de huevo de campo (12% v/v) para uno de ellos (YH), mientras que en el otro se omitió (SYH). Se utilizaron pajillas de 0,5 ml que fueron sumergidas en nitrógeno líquido a -196°C. La descongelación de las pajillas se realizó a una temperatura de 37°C. Así mismo, se evaluaron parámetros de calidad seminal como motilidad (%), duración de la motilidad (s), viabilidad espermática (%), concentración espermática (SPZ/µL) y anormalidades morfológicas (%) en semen fresco (el cual se usó como control) y post-congelación. De igual manera; se evaluó la calidad de los ovocitos de las hembras para posteriormente establecer la tasa de fertilidad (%). Se realizó un diseño completamente al azar, además de usar estadística descriptiva y paramétrica, con un nivel de confianza del 95%.spa
dc.description.abstractThe objective of the present study was to provide knowledge about the process of cryopreserve semen of bocachico llanero (Prochilodus mariae) a fish native to the Orinoco River basins. Through the comparison of two protocols of cryopreservation in which were used or omitted egg yolk in the composition of cryopreservantion diluent and its effects on seminal quality and fertility, the evaluation of a packaging systems and morphological abnormalities. For this study was used the semen of five males sexually mature and five females to obtain oocytes. The fishes were hormonally induced with Carp Pituitary Gland Extract (PGE). The protocols used sodium chloride (NaCl 0,9%), methanol (10%) and glucose (6%) with egg yolk (12%) for one of them while was omitted in another. To obtain gametes; the fishes were tranquilized by the action of 2-Phenoxyethanol. In addition, were used straws of 0,5 ml which were submerged in liquid nitrogen to -196°C. The straws were thawed al 37°C. The parameters of seminal quality as motility (%), duration of motility (s), spermatic viability (%), spermatic concentration (SPZ/µl) and morphological abnormalities (%) in fresh semen (which was used like control) and cryopreservedthawed semen. Likewise, the quality of the female oocytes was evaluated to later set the Fertility rate (%). A completely random design was performed, in addition, to using descriptive and parametric statistics with a 95% confidence level.eng
dc.description.degreelevelPregradospa
dc.description.degreenameMedico(a) Veterinario(a) Zootecnistaspa
dc.description.programMedicina Veterinaria y Zootecniaspa
dc.description.tableofcontentsTabla de contenido. -- Lista de figuras . -- Resumen . -- Abstract. -- Introducción . -- Objetivo general. -- Marco teórico. -- Aspectos generales de la especie. -- Crioconservación seminal en peces. -- Calidad seminal en peces . -- Metodología . -- Localización y descripción del área de estudio . -- Material biológico . -- . -- Obtención de semen y ovocitos. -- Congelación del semen . -- Evaluación de la calidad seminal . -- Evaluación de la calidad de ovocitos . -- Prueba de fertilidad . -- Diseño experimental . -- Análisis estadístico. -- Resultados. -- Discusión. -- Conclusiones . -- Referencias bibliográficas.spa
dc.format.extent62 páginasspa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.identifier.citationArdila Artunduaga, Michelle B. (2021). Efecto de la omisión de la yema de huevo en la Crioconservación de semen de bocachico llanero (prochilodus Mariae) sobre la calidad seminal posdescongelación y Fertilidad. [Trabajo de grado, Universidad de los Llanos]. Repositorio digital Universidad de los Llanos.spa
dc.identifier.instnameUniversidad de los Llanosspa
dc.identifier.reponameRepositorio digital Universidad de los Llanosspa
dc.identifier.repourlhttps://repositorio.unillanos.edu.co/spa
dc.identifier.urihttps://repositorio.unillanos.edu.co/handle/001/3077
dc.language.isospaspa
dc.publisherUniversidad de los Llanosspa
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias Agropecuarias y Recursos Naturalesspa
dc.publisher.placeVillavicenciospa
dc.relation.referencesAas GH, Refstie T, & Gjerde B. Evaluation of milt quality of Atlantic salmon. Aquaculture, 1994; 95(1-2): 125-132.spa
dc.relation.referencesAboagla EME, & Terada T. Effects of egg yolk during the freezing step of cryopreservation on the viability of goat spermatozoa. Theriogenology, 2004; 62(6): 1160-1172.spa
dc.relation.referencesAriagno J, Mormandi E. Guía práctica para la evaluación del semen. Buenos Aires, AR. Laboratorio de Fertilidad Masculina, Departamento de Bioquímica Clínica, Facultad de Farmacia y Bioquímica, Universidad de Buenos Aires, 2015; 29-35.spa
dc.relation.referencesArias-Rodríguez L. Inactivación genética de esperma e inducción de ginogénesis y de triploidía en el botete diana Sphoeroides annulatus (Jenyns, 1842) (Doctoral dissertation, Tesis de maestría, Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo, Mazatlán, Sinaloa, México). 2001.spa
dc.relation.referencesArias CJ, Zaniboni-Filho E, Pardo-Carrasco SC, Atencio-García V, Vásquez-Torres W. Desarrollo gonadal y efectos de la domesticación y la restricción alimenticia de yamú Brycon siebenthalae en cautiverio. Memorias VIII Jornada de Acuicultura. Villavicencio, Meta, 2002; 55-63.spa
dc.relation.referencesAtencio V. Producción de avelinos de especies nativas. Revista MVZ Córdoba, 2001; 6(1): 9-14.spa
dc.relation.referencesAtencio VJ, Pérez EJ, Espinosa JA, Pardo SC. Evaluación de dimetilacetamida como crioprotector para la crioconservación de semen de bocachico Prochilodus magdalenae. Archivos de medicina veterinaria, 2013; 45(2): 151-158.spa
dc.relation.referencesAtencio VJ, Espinosa JA, Martínez JG, Pardo Carrasco SC. Insemination of bocachico fish (Prochilodus magdalenae) with fresh or cryopreserved semen: effect of spermatozoa/oocyte ratio. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 2015; 28(4): 347-355.spa
dc.relation.referencesAtencio V, Longas MD, Petro CM, Pietro-Guevara M, Espinosa-Araujo J. Crioconservación de semen de dorada Brycon moorei con dimetilsulfóxido. Revista Colombiana de Biotecnología, 2017; 19(2): 81-88.spa
dc.relation.referencesBaynes SM, Scott AP. Cryopreservation of rainbow trout spermatozoa: the influence of sperm quality, egg quality and extender composition on post-thaw fertility. Aquaculture, 1987; 66(1): 53-67.spa
dc.relation.referencesBillard R. Sperm physiology and quality. Broodstock management and egg and larval quality. 1995; 25-52.spa
dc.relation.referencesBobe J, Labbé C. Egg and sperm quality in fish. General and comparative endocrinology, 2010; 165(3): 535-548.spa
dc.relation.referencesBozkurt Y, Yavaş İ, Yıldız C. Effect of different avian egg yolk types on fertilization ability of cryopreserved common carp (Cyprinus carpio) spermatozoa. Aquaculture international, 2014; 22(1): 131-139.spa
dc.relation.referencesBustamante Varon LF, Quintero Pinto LG, Martinez Rueda N. Desarrollo larval del coporo Prochilodus mariae (Eigenmann, 1922) (Pisces: Characiformes: Prochilodontidae), en estanques abonados y con el uso de un suplemento alimenticio. Tesis pregrado. Instituto Nacional de Pesca y Acuicultura, Santa Fe de Bogota (Colombia). 1997.spa
dc.relation.referencesCarneiro PC, Azevedo HC, Santos JP, Maria AN. Cryopreservation of tambaqui (Colossoma macropomum) semen: extenders, cryoprotectants, dilution ratios and freezing methods. CryoLetters, 2012; 33(5): 385-393.spa
dc.relation.referencesCarvalho ACMD. Criopreservação de sêmen de tambaqui Colossoma macropomum em criotubo. 2013.spa
dc.relation.referencesCosson J, Billard R, Cibert C, Dreanno C, Suquet M. Ionic factors regulating the motility of fish sperm. The male gamete: from basic science to clinical applications. 1999; 161-186.spa
dc.relation.referencesCasallas PEC, Robles VMM, Santamaría YMV. Evaluación de diferentes crioprotectores para la crioconservación de espermatozoides de yamú (Brycon amazonicus). Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 2006; 19(2): 152-159.spa
dc.relation.referencesCasallas PEC, Velasco-Santamaría YM, Robles VMM. Estado actual de la crioconservación de semen de peces tropicales en semen de peces tropicales en Colombia: resultados y perspectivas. Revista de ingeniería en producción acuícola, 2006; 6(2): 1-10.spa
dc.relation.referencesDong QX, Rodenburg SE, Hill D, VandeVoort CA. The role of low-density lipoprotein (LDL) and high-density lipoprotein (HDL) in comparison with whole egg yolk for sperm cryopreservation in rhesus monkeys. Asian journal of andrology, 2011; 13(3): 459.spa
dc.relation.referencesDumorne K, Figueroa E, Cosson J, Lee‐Estevez M, Ulloa‐Rodríguez P, Valdebenito I, Farias JG. Protein phosphorylation and ions effects on salmonid sperm motility activation. Reviews in Aquaculture, 2018; 10(3): 727-737.spa
dc.relation.referencesFlórez F. Observaciones ecológicas sobre los peces Bocachico real (Prochilodus mariae eigenmann 1922) y el Bocachico cardumero (Suprasinelepichthys laticeps valenciennes 1849) del sistema del rio metica y algunos datos comparativos del Bocachico (Prochilodus r). Acta Biológica Colombiana, 1986;1(2): 9-33.spa
dc.relation.referencesGonzález J, Hernández G, Messia O, Pérez A. Extracto hipofisiario de Coporo (Prochilodus mariae) como agente inductor sustitutivo en la reproducción de su misma especie. Zootecnia Tropical, 2010; 28(1): 25-32.spa
dc.relation.referencesFlesch FM, Gadella BM. Dynamics of the mammalian sperm plasma membrane in the process of fertilization. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Reviews on Biomembranes, 2000;1469(3): 197-235.spa
dc.relation.referencesInaba K. Molecular mechanisms of the activation of flagellar motility in sperm. Fish spermatology. 2008; 63-101.spa
dc.relation.referencesICA - Instituto colombiano agropecuario. Protección agropecuaria de las especies acuícolas. 2017. https://www.ica.gov.co/getdoc/b082c759-18c7-47da-bed6-0ebe76b48fe0/acuicolas-(1).aspxspa
dc.relation.referencesLahnsteiner F, Weismann T, Patzner R. Cryopreservation of semen of the grayling (Thymallus thymallus) and the Danube salmon (Hucho hucho). Aquaculture, 1996; 144(1-3): 265-274.spa
dc.relation.referencesLahnsteiner F, Berger B, Horvath A, Urbányi B, Weismann T. Cryopreservation of spermatozoa in cyprinid fishes. Theriogenology, 2000; 54(9): 1477-1498.spa
dc.relation.referencesLeite LV, Oliveira FDCE, Nunes LT, Nunes JF, Salmito-Vanderley CSB. Criopreservação de sêmen de tambaqui (Colossoma macropomum) com ACP® adicionado de gema de ovo. Revista Brasileira de Engenharia de Pesca, 2011; 6(2): 23-29.spa
dc.relation.referencesLi P, Wei Q, Liu L. DNA integrity of Polyodon spathula cryopreserved sperm. Journal of Applied Ichthyology, 2008; 24(2): 121-125.spa
dc.relation.referencesLinhart O, Cosson J, Mims SD, Shelton WL, Rodina, M. Efectos de los iones sobre la motilidad de los espermatozoides de pez espátula (Polyodon spathula) frescos y desmembrados. REPRODUCCIÓN-CAMBRIDGE, 2002; 124 (5): 713-719.spa
dc.relation.referencesLópez-Hernández JC, Osorio-Pérez A, Jiménez-Félix SA, Páramo-Delgadillo S, Márquez-Couturier G, Yasui GS, Arias-Rodriguez L. Artículo de Revisión: La calidad espermática en peces y los métodos de evaluación. Journal of Marine and Coastal Sciences. 2018; 67-96.spa
dc.relation.referencesMaría AN, Viveiros ATM, Freitas RTF, Oliveira AV. Extenders and cryoprotectants for cooling and freezing of piracanjuba (Brycon orbignyanus) semen, an endangered Brazilian teleost fish. Aquaculture, 2006; 260(1-4): 298-306.spa
dc.relation.referencesMartínez J, Atencio V, Tarazona A, Pardo S. Estandarización de protocolos para la crioconservación de semen de bocachico y el análisis de la movilidad mediante el software sperm class analizar. Primer seminario de investigaciones agrarias. Facultad Nacional de Agronomía, 2009; 62(3): 51-64.spa
dc.relation.referencesMartínez JG, Carrasco SP. Crioconservación de semen en peces: efectos sobre la movilidad espermática y la fertilidad. Acta Biológica Colombiana, 2010; 15(2): 3-23.spa
dc.relation.referencesMartínez G, Atencio V, Pardo S. Efectos de la concentración de glucosa sobre la activación de la movilidad espermática en bocachico Prochilodus magdalenae (Pisces, Characiformes). Revista MVZ Córdoba, 2011; 16(2): 2554-2563.spa
dc.relation.referencesMartínez JG, Pardo CS. Effect of freezing and thawing rates on sperm motility in Bocachico Prochilodus magdalenae (Pisces, Characiformes). Revista MVZ Córdoba, 2013; 18(1): 3295-3303.spa
dc.relation.referencesMedina-Robles VM, Guaje-Ramírez DN, Marin-Cossio LC, Sandoval-Vargas LY, Casallas PEC. Crioconservación seminal de Colossoma macropomum como estrategia de producción y conservación en la Orinoquia Colombiana. Orinoquia, 2019; 23(1): 15-24.spa
dc.relation.referencesMedina-Robles VM, Santamaría YV, Casallas PEC. Aspectos generales de la crioconservación espermática en peces teleósteos. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 2005; 18(1): 34-48.spa
dc.relation.referencesMiliorini AB, Murgas LDS, Rosa PV, Oberlender G, Pereira GJM, da Costa DV. A morphological classification proposal for curimba (Prochilodus lineatus) sperm damages after cryopreservation. Aquaculture Research, 2011; 42(2): 177-187.spa
dc.relation.referencesMárián TERGZ, Krasznai ZOLTAN, Balkay L, Balazs M, Emri M, Bene L, Tron L. Hypo-osmotic shock induces an osmolality-dependent permeabilization and structural changes in the membrane of carp sperm. Journal of Histochemistry & Cytochemistry, 1993; 41(2): 291-297.spa
dc.relation.referencesMárián TERGZ, Krasznai ZOLTAN, Balkay L, Balazs M, Emri M, Bene L, Tron L. Hypo-osmotic shock induces an osmolality-dependent permeabilization and structural changes in the membrane of carp sperm. Journal of Histochemistry & Cytochemistry, 1993; 41(2): 291-297.spa
dc.relation.referencesMüller K, Labbé C, Zachowski A. Phospholipid transverse asymmetry in trout spermatozoa plasma membrane. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Biomembranes, 1994; 1192(1): 21-26.spa
dc.relation.referencesMurakami AE, Rodrigueiro RJB, Santos TC, Ospina-Rojas IC, Rademacher M. Effects of dietary supplementation of meat-type quail breeders with guanidinoacetic acid on their reproductive parameters and progeny performance. Poultry Science, 2014; 93(9): 2237-2244.spa
dc.relation.referencesFAO - Organización de las naciones unidas para la alimentación y la agricultura. Visión general del sector acuícola nacional – Colombia. FAO Fisheries and Aquaculture Department. 2005.spa
dc.relation.referencesFAO - Organización de las naciones unidas para la alimentación y la agricultura. Pesca en cifras 2015 - Colombia. FAO Fisheries and Aquaculture Department. 2015.spa
dc.relation.referencesOrtega JP, Yossa MI. Desempeño productivo del coporo con dietas isotópicas. Orinoquia, 2014; 18: 278-285.spa
dc.relation.referencesRamírez-Gil H, Ajiaco-Martínez RE, Barreto-Reyes C. Tallas de captura de Prochilodus mariae en la parte alta del río Meta, Orinoquia colombiana. Orinoquia, 2015; 19(2): 174-185.spa
dc.relation.referencesRamírez-Merlano J, Robles VMM, Casallas PEC. Crioconservación espermática en peces, un acercamiento en Siluriformes. Orinoquia, 2010; 14(1): 59-71.spa
dc.relation.referencesRodríguez-Olarte D, Coronel AAYJ. Introducción del coporo Prochilodus mariae Eigenmann 1922 (Pisces: Prochilodontidae) en el río Aroa, cuenca del Caribe, Venezuela. Memoria de la Fundación La Salle de Ciencias Naturales, 2005; 163: 133-137.spa
dc.relation.referencesRurangwa E, Kime DE, Ollevier F, Nash JP. The measurement of sperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish. Aquaculture, 2004; 234(1-4): 1-28.spa
dc.relation.referencesTabares CJ, Tarazona AM, Ángel MO. Fisiología de la activación del espermatozoide en peces de agua dulce. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 2005; 18(2): 149-161.spa
dc.relation.referencesTartaglione CM, Ritta MN. Prognostic value of spermatological parameters as predictors of in vitro fertility of frozen-thawed bull semen. Theriogenology, 2004; 62(7): 1245-1252.spa
dc.relation.referencesVincent C, Prulière G, Pajot-Augy E, Campion E, Douzou P. Biophysical chemical aspects of cellular cryobehavior. Biophysical Chemistry, 1988; 29 (1-2): 161- 169.spa
dc.relation.referencesViveiros ATM, Lock EJ, Woelders H, Komen, J. Influence of cooling rates and plunging temperatures in an interrupted slow-freezing procedure for semen of the African catfish, Clarias gariepinus. Cryobiology, 2001; 43(3): 276-287.spa
dc.relation.referencesWatson PF. La protección de los espermatozoides de carnero y toro por la fracción de lipoproteínas de baja densidad de la yema de huevo durante el almacenamiento a 5 C y la congelación. Revista de biología térmica, 1976; 1 (3): 137-141.spa
dc.relation.referencesWatson PF. The causes of reduced fertility with cryopreserved semen. Animal reproduction science, 2000; 60: 481-492.spa
dc.rightsDerechos Reservados - Universidad de los Llanos, año 2021spa
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dc.rights.licenseAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)spa
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dc.subject.armarcLíquidos corporales
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dc.subject.armarcDiseminación de semillas
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